桑葚果酒酵母菌的筛选及其发酵性能研究

您所在的位置:网站首页 测果酒酒精度仪器叫什么 桑葚果酒酵母菌的筛选及其发酵性能研究

桑葚果酒酵母菌的筛选及其发酵性能研究

2024-07-09 18:09| 来源: 网络整理| 查看: 265

桑葚又叫桑子、桑枣、桑果,桑科落叶乔木桑树的果实。桑葚果实富含多种营养成分及黄酮类化合物,传统医学认为,桑葚能补益肝肾、黑发明目、养血生津,具有多种保健功能;现代医学研究发现,桑葚具有增强人体免疫力、促进造血细胞生长、防止人体动脉硬化、骨骼关节硬化以及促进新陈代谢等生理功效,被医学界誉为“二十一世纪的最佳保健果品”[1-3]。

由于桑葚是季节性水果,在常温下易出现腐烂、变色、变味等情况,不宜储藏运输,保质期短,所以将桑葚果实加工成便于运输和储藏的其他产品,对于提高桑葚的利用价值具有重要作用。目前以桑葚为原料开发的产品种类较少,主要集中在桑葚汁、桑葚酒、蜜饯、罐头、果酱、天然花色苷等产品[4-6]。其中利用桑葚酿造果酒,既有利于保持桑葚鲜果中的天然营养成分,发酵产生的次生代谢产物又能够增强桑葚酒的保健功能,具有很高的开发利用价值和市场潜力[7]。桑葚酒的品质在很大程度上与所用酵母菌的发酵特性密切相关,然而目前为止,市场上大部分果酒的酿酒均采用的是葡萄酒酿酒酵母[8],适宜桑葚酒酿造的专业酵母菌尚未见报道[9-11]。因此,本研究筛选适宜桑葚酒酿造的专用酵母菌株,并进一步研究其发酵特性,对于提升桑葚酒品质,促进桑葚产业发展均具有一定的理论意义和实用价值。

1 材料与方法1.1 试验材料1.1.1 菌种

农科院农产品加工研究所微生物实验室自行分离的桑葚酵母菌株,分别为SG1-1、SG1-2、SG1-3、SG1-4、SG1-5、SG 2-1、SG 2-2、SG 2-3、SG 2-4、SG 3-1、SG 3-2、SG 3-3,共 12 株。

1.1.2 培养基

YPD培养基:杭州百思生物技术有限公司;取50 g固体粉末状YPD培养基,溶于1000mL蒸馏水中,调节pH值至6.5左右,115℃高压灭菌20 min后冷却备用。

1.1.3 试剂

无水乙醇、氢氧化钠、盐酸:南京寿德试验器材有限公司;偏重亚硫酸钾:北京君悦诚品科贸有限公司;以上化学试剂均为分析纯。

1.1.4 仪器与设备

SW-CJ-1B型单人单面净化工作台:上海杰兔工贸有限公司;Blue-pard生化培养箱:上海一恒科学仪器有限公司;Five Easy Plus试验室pH计:梅特勒-托利仪器(上海)有限公司;ML204电子天平:梅特勒-托利仪器(上海)有限公司;分光光度计:上海精密科学仪器有限公司;SHENAN灭菌锅:上海宜川上岭仪器有限公司;欧诺华榨汁机:美国伊斯曼公司;WYT糖度计:成都豪创光电仪器有限公司;THZ-C-1全温振荡器:太仓市试验设备厂;LXJ-IIB离心机:上海安亭科学仪器厂。

1.2 试验方法1.2.1 酵母菌的分离

取-20℃保存的菌种[12],接种于YPD液体培养基中,在28℃、150 r/min的摇床培养箱内培养24 h,将菌种活化,并进行传代培养,备用。

1.2.2 酵母菌的筛选

酵母菌的初筛:将活化的菌种按8%的接种量接入到YPD液体培养基中,采用杜氏小管发酵法[13]观察各菌株的产气量和产气速率,初步获得产气能力较强的菌株。

酵母菌的复筛:耐糖、酒精、SO2、及耐酸性筛选。将得到的产气性较强的菌株分别接入到糖度为14,18,21,24,27°Bx,酒精浓度为8%、10%、12%、14%、16%、18%,SO2含量为 60、80、100、120、140 mg/L,pH 值为2.0、2.5、3.0、3.5、4.0 的 YPD 液体培养基中,28 ℃静置培养,48 h后分别观察杜氏小管的产气情况。进一步筛选出对糖度、酒精度、SO2、酸性耐受性较强的菌株。

1.2.3 酵母菌发酵性能的测定

1.2.3.1 酵母菌最适温度测定

将筛选得到的SG3-2酵母种子液按8%接种量接种于 21 °Bx的桑葚汁中,分别于 20、23、25、28、30、33、35℃条件下培养5 d,于600 nm波长下测定菌悬液的OD值,依据OD值的大小确定其最适温度。

1.2.3.2 酵母菌耐酸能力的测定

将筛选出的SG3-2酵母种子液分别接种于pH值为 2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0 的桑葚汁(21 °Bx)中,28 ℃的恒温培养5 d,在600 nm波长下测吸光度,根据吸光度的大小判断SG 3-2菌株的耐酸性能。

1.2.3.3 酵母菌耐酒精能力的测定

将筛选得到的SG3-2酵母种子液按8%的接种量分别接种于含不同乙醇体积分数(8%、10%、12%、14%、16%、18%)的桑甚汁(21°Bx)中,28℃条件下恒温培养5 d,在600 nm波长下测OD值。

1.2.3.4 酵母菌耐SO2能力的测定

21°Bx的桑葚汁中加入偏重亚硫酸钾,使SO2浓度分别为 60、80、100、120 、140、160 mg/L,接入 SG3-2酵母菌种子液,28℃条件下培养5 d,600 nm处测其吸光度,依据OD值大小确定其对SO2的耐受能力。

1.2.4 生长曲线的测定

取装有200 mL YPD液体培养基的250 mL三角瓶1个,不接种酵母菌,作为空白对照。

将菌种SG3-2接种于灭菌的YPD液体培养基中,置于28℃的恒温培养箱中进行培养,每隔4 h取样,在560 nm处测定其吸光度,根据检测结果绘制菌株的生长曲线。

2 结果与分析2.1 酵母菌种的筛选2.1.1 酵母菌产气性能的比较

分离的酵母菌株采用杜氏管发酵法,在28℃的恒温培养箱中培养24 h时,有少量气体产生,而48 h后大多数菌株都有大量气体产生,其中7株酵母菌株产气量约等于杜氏小管的体积,分别为SG1-4、SG1-5、SG2-3、SG2-4、SG3-1、SG3-2、SG3-3,说明这些菌株发酵能力旺盛,酵母菌株的产气情况见表1。

表1 酵母菌株的产气情况Table 1 Gas-producing conditions of yeast strains

注:“+”产气量为杜氏小管体积的1/3;“++”产气量为杜氏小管的2/3;“+++”产气量为杜氏小管满体积。

发酵时间/h 产气情况 菌株数(株)24 + 5++ 4+++ 3 48 + 3++ 2+++ 7

2.1.2 酵母菌耐酸性试验结果

在不同酸度的液体培养基中培养酵母菌,可以筛选出耐高酸性的菌株见表2。由表2可以看出,在产气性良好的7株菌株中,当pH值为2.0时,所有菌株都不能生长,而pH值等于2.5时,有5株能产生大量气泡,分别为 SG1-4、SG1-5、SG3-1、SG3-2、SG3-3,说明这5株菌株耐酸性较强,在高酸性环境中仍能正常生长。当pH值大于3.0时,所有菌株均有大量气泡产生。

表2 酵母菌耐酸性试验结果Table 2 Test result of acid-resistance of yeasts

注:“——”表示没有气体产生;“+++”产气量为杜氏小管满体积。

pH值 2.0 2.5 3.0 3.5 4.0产气量 — +++ +++ +++ +++菌株数 0 5 7 7 7

2.1.3 菌株对糖度的耐受性试验

在不同糖度的培养基中,菌株的生长情况也有所不同见表3。由表3可以看出,当糖度小于18°Bx时,所筛选出的5株耐酸性较强的菌株均有大量气泡产生,而糖度大于21°Bx时,则其中有4株菌株生长良好,有大量气泡产生,分别为SG1-5、SG3-1、SG3-2、SG3-3,将这4株菌株作为耐SO2能力测试的出发菌株。

表3 酵母菌对糖度的耐受性试验结果Table 3 Test results of glucose-tolerance of yeasts

注:“+++”产气量为杜氏小管满体积。

糖度/(°Bx)1418212427产气量 +++ +++ +++ +++ +++菌株数 5 5 4 4 4

2.1.4 酵母菌耐SO2性能的比较

在培养基中添加偏重亚硫酸钾,可筛选出能耐高浓度SO2的菌株见表4。如表4,在酵母菌耐SO2试验中得到的4株出发菌株在SO2浓度小于100mg/L时,杜氏小管中均有大量气泡产生,当SO2浓度达到120 mg/L时,有一株菌株无气泡产生,说明其不能耐受较高浓度的SO2,而其他3株均可以耐受140 mg/L的SO2且产生大量气泡,其编号分别为SG1-5、SG3-2、SG3-3。

表4 酵母菌耐SO2性能试验结果Table 4 Test results of yeasts tolerance to SO2

注:“+++”产气量为杜氏小管满体积。

SO2浓度/(mg/L)6080100120140产气量 +++ +++ +++ +++ +++菌株数 4 4 4 3 3

2.1.5 酵母菌的耐酒精能力筛选

根据以上试验所筛选出的3株优良菌种,进行不同乙醇浓度的耐受性试验见表5。结果显示,乙醇浓度小于12%时,3株菌株均能正常生长,当乙醇浓度为14%时,其中有两株(编号为SG1-5和SG3-2)菌株有气体产生,当浓度达到16%时,仅有1株能正常生长,编号为SG3-2。通过以上试验,所筛选出的SG3-2菌株产气性能好,耐酸性,耐SO2,耐乙醇能力较强,可作为桑葚果酒发酵的优良酵母。

表5 菌株的耐酒精测定结果TabIe 5 Determination results of alcohol-tolerance of strains

注:“+++”产气量为杜氏小管满体积。

酒精浓度/% 8 10 12 14 16产气量 +++ +++ +++ +++ +++菌株数 3 3 3 2 1

2.2 酵母菌发酵能力的测定结果2.2.1 酵母菌的最适温度

酵母菌对温度的耐受性试验见表6。由表6可以看出,SG3-2酵母菌在不同的温度条件下,其菌悬液的OD值不同,说明各发酵液中菌体浓度不同。当温度从20℃不断升高时,发酵液的OD值也不断增大,当温度达到30℃时,其OD值达到最大,当温度再升高时,菌悬液的OD值有所下降,说明酵母菌的死亡速率大于新生速率。SG3-2最适生长温度为30℃,但在果酒发酵过程中,若温度过高,则会导致酒体风味变差,所以在实际发酵时,其发酵温度应低于30℃。

表6 酵母菌对温度的耐受性试验Table 6 The tolerance test of yeast to temperatures

温度/℃ 20 23 25 28 30 33 35 OD600值 0.423 0.506 0.572 0.625 0.682 0.601 0.596

2.2.2 酵母菌耐酸能力的测定

酵母菌耐酸性试验见表7。由表7可以看出,SG3-2酵母菌在pH值为2.0~7.0范围内均能生长,且随着pH值的逐渐增大,其OD值也逐渐变大,当pH值达到4.0时,OD值达到最大,pH值继续增加,其OD值减小。说明pH值为4.0时,菌体浓度最大,酵母菌生长最为旺盛,低酸性环境不适合酵母菌SG3-2的生长,所以其最适pH值为4.0左右。

表7 酵母菌耐酸性试验Table 7 The test of acid-resistance of yeast

pH值 2.0 3.0 4.0 5.0 6.0 7.0 OD600值 0.473 0.689 0.804 0.644 0.601 0.462

2.2.3 酵母菌耐酒精能力的测定

在不同乙醇浓度的的培养基中,酵母菌的生长情况不同见表8。当乙醇浓度由8%到14%逐渐增大时,培养液的OD值逐渐增大,乙醇浓度为14%,OD值最大,酵母菌生长速率最快,最适合果酒发酵,当乙醇浓度再增加时,其OD值逐渐变小,说明较高浓度的乙醇则会抑制酵母菌的生长。

表8 酵母菌的耐酒精能力Table 8 The alcohol-resistance of yeasts

乙醇浓度/% 8 10 12 14 16 18 OD600值 0.545 0.560 0.596 0.705 0.676 0.597

2.2.4 酵母菌耐SO2能力测定

在发酵前往桑葚汁中加入SO2,不仅可抑制杂菌的生长,还可以防止色素被氧化。因此,具有较强的SO2耐受性的酿酒酵母有利于优质桑葚酒的酿造,酵母菌的耐SO2能力见表9。通过表9可以发现,随着SO2浓度的增加,发酵液的OD值逐渐减小。当SO2浓度为100 mg/L时,OD值减小了25%,当SO2浓度为120 mg/L时,OD值减小了42%,说明SO2浓度较高,对酵母菌的生长抑制作用越大。因此最适的SO2浓度为 100 mg/L~120 mg/L。

表9 酵母菌的耐SO2能力Table 9 The resistance to SO2of the yeasts

SO2浓度/(mg/L)6080100120140160 OD600值 0.687 0.604 0.515 0.396 0.334 0.302

2.3 酵母菌生长曲线的测定结果

酵母菌SG3-2的生长曲线如图1。由图1可以看出,随着培养时间的增长,培养液的吸光度逐渐增大。SG3-2生长的对数期为4 h~16 h,稳定期是16 h~28 h,在此期间,菌株活力最强,生长最为旺盛。在28h时,吸光度达到最大值,是菌株取样的最佳时期。28 h后进入衰退期。菌株SG3-2的对数期和稳定期都较长,有利于产生代谢物质和发酵果酒,因此可作为桑葚果酒酿造的优良酵母。

图1 菌株3-2的生长曲线Fig.1 The growh curve of the yeast SG3-2

3 结论

不同酵母菌种的发酵能力,产酒精能力和对发酵环境的适应性不同,所得到的果酒的风味和质量也不同。优良的菌株不仅发酵速度快,发酵能力强,而且可以产生良好的酒香和果香味。从桑葚中分离得到的12株酵母菌株,通过杜氏管发酵法和吸光光度法,可得到一株耐酸性,耐SO2及耐酒精能力强的菌株,该菌株在pH值为4.0~4.5,SO2浓度为100 mg/L,酒精浓度为14%的条件下,仍然能够正常生长,而且在生长到28 h时,生长最为旺盛。

参考文献:

[1]Yuan Qingxia,Xie Yufeng,Wang Wei,et al.Extraction optimization,characterization and antioxidant activityin vitro of polysaccharides from mulberry(Morus alba L.)leaves[J].Carbohydrate Polymers,2015,128:52-62

[2]梁桂秋,吴倩倩,祁广军,等.桑葚酒的营养价值及保健作用[J].现代食品科技,2011,27(4):457-460

[3]曾俊.桑葚的植物化学成分及其在食品加工中的研究进展[J].食品研究与开发,2015(7):127-130

[4]吴敏,张东雷,王爽,等.桑葚保健功能的研究进展[J].食品研究与开发,2012(9):214-217

[5]颜雪辉.桑葚酒专用酵母选育及发酵工艺研究[D].武汉:湖北工业大学,2014

[6]梁艳英,任玉巧,王华.桑椹果酒及饮品的研究进展[J].酿酒,2005,32(6):48-50

[7]王琳、岳田利.桑椹红色素研究进展[J].食品科技,2004(6):58-61[8]史路路,颜雪辉,吕梅,陈茂彬.低度白酒生产方式的研究进展[J].酿酒,2013,40(2):17-19

[9]李静,黄科.桑葚自然发酵过程中酵母分离的初步研究[J].西安文理学院学报:自然科学版,2014,17(3):37-40

[10]Dai Chunhua,Feng Xiong,He Ronghai.Effects of low-intensity ultrasound on the growth,cell membrane permeability and ethanol tolerance of Saccharomyces cerevisiae[J].Ultrasonics Sonochemistry,2017(36):191-197

[11]YeLiu,WeihaoWang,YahanZhou,et al.Isolation,identification and in vitro screening of Chongqing orangery yeasts for the biocontrol of Penicillium digitatum on citrus fruit[J].BiologicalControl,2017,4(2):18-24

[12]潘训海,刘新露,罗惠波,等.桑葚果酒酵母的分离及筛选[J].江苏农业科学,2013,41(5):249-251

[13]刘贞,刘小翠,赵思明,等.发酵米浆中高发酵性能酵母菌和乳酸菌的筛选和鉴定[J].食品科学,2010,31(7):232-235

[14]郑平,王在谦,李秀萍.果醋酿造中糖度测定方法及酒精度、酸度对糖度测定的影响[J].中国调味品,2015,40(9):16-20

[15]熊子书.中国酿造酵母菌的研究:不同酒类酵母筛选与应用[J].酿酒科技,2002(5):28-32

[16]张明科.筛选优良酵母提供啤酒的发酵度[J].酿酒科技,2003(3):60-61



【本文地址】


今日新闻


推荐新闻


CopyRight 2018-2019 办公设备维修网 版权所有 豫ICP备15022753号-3