常见的 RNA 提取方法有 TRIzol 法、吸附法，这两个方法各有所长，但都不能保证提取的 RNA 样本一定合格。

因而，提取完成后应测定 RNA 的浓度及吸光度。通常，在 260，280，230 nm 处分别测定其吸光度（A260、A280、A230）并计算其比值（A260 /A280，A260 /A230）。

230/260/280 究竟有何意义？

A260 为核酸的吸光度，A280 为蛋白质的吸光度，A230 为其他杂质（多糖等）的吸光度。纯 DNA 的 A260 /A280 为 1.8，纯 RNA 的 A260 /A280 为 2.0。

如果 OD 比值不在范围内该如何解决呢？

再次洗涤样本！

75% 乙醇沉淀 RNA 后重新吸附、洗涤；若采用 TRIzol 法提取 RNA，可直接洗涤两次。洗涤后离心时可两次分别将 EP 管置于不同的方向，便于彻底洗涤 RNA 样本。通常洗涤两次后可使测得的 OD 值较为理想。

引物特异性太差

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提到 PCR 老是 P 不出，大部分同学都会觉得是引物的锅。

引物，是进行 PCR 实验的必备条件。其特异性的问题可通过「BLAST」搞定，让人比较头痛的是引物可以形成「发夹结构」或「二聚体」（即在＜75℃ 时出现溶解曲线的峰），影响扩增效率，最终导致实验结果不可用。

那么，这个问题能否解决呢？

有！设计引物的时候用「RNAstructure」预测一下引物的二级结构即可。

那么，这个软件要如何使用呢？文章篇幅有限，大家可以点击下方卡片查看全部教学内容 👉 点此查看 软件教学

最后一步

保证扩增效率

好多同学反馈： 同一批样本、同一批引物、甚至都用一起配的胶了，P 出来的结果依旧不！一！样！真的很崩溃，但这其实不是操作者的问题。

不知道各位看官有没有遇到类似的问题？先说说出现这类问题的原因吧：

1. 扩增条件非最佳；

2. 样本中含有抑制扩增的物质，如乙醇。

一对引物有其特定的 Tm 值，但 Tm 值时未必是其最佳扩增温度。温度过高时，扩增效率过低，差异部分的目的基因不能被扩增，导致「假阴性」结果的出现。那么，如何确定扩增效率是否满足要求呢？

通常，拿到新引物后应从 Tm- 5℃ 寻找其适宜的扩增温度，在某温度起为特异性扩增。

然后，在特异性扩增的温度下检测扩增效率：将 cDNA 梯度稀释（一般为 2×），测试稀释后的样本 Ct 值差异是否为 1 左右。

1、若差值为 1，则扩增效率良好，可进行正式实验。

2、若在特异性扩增的温度范围内不能使 Ct 值差异为 1，则需考虑重新设计引物。

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专题包含哪些内容

01-保姆级教学视频

02-超多 Protocol

03-经典实验问答

04-延伸图文阅读

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