苏木素 |
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1、试剂准备 酸酒精:在100mL 70%乙醇中加入1mL 盐酸,室温保存。 注意:冰冻切片后,各种步骤(干燥,乙醇或甲醇固定,热固定,使用带电的或有粘性的盖片)保证组织切片在染色过程中不脱落。 2、95%乙醇:在HE染色开始前,组织切片需要固定并水化。将切片置于95%乙醇中约2min,开始水化并固定组织。 注意:跳过使用95%乙醇对组织进行水化和固定,并不影响形态学上的细节。 3、水化:进一步对组织切片进行水化3~5min,并冲掉前一步残留的乙醇。 注意:与第一步相似,跳过水化对于组织染色的质量非常小。 4、苏木素:水化后,组织切片用苏木素染色1~3min,可根据染色结果和要求调整染色时间。苏木素是一种基本染料,可以对细胞的酸性成分进行染色,包括核酸、粘多糖、酸性糖蛋白,将他们染成蓝-紫色。 注意:没有苏木素,伊红会将组织染成亮粉红色;显而易见的是缺乏细胞核。组织结构很难区分,细胞内成分几乎都不存在,难以辨别。而上述问题,可以通过使用苏木素进行复染。 染色较弱是由于: (1)自身溶解或者固定不好; (2)过度脱钙; (3)染色时间不足; (4)过度脱色--- 酸与醇的比例过高或者酸乙醇脱色时间过长; (5)苏木素的作用较弱:苏木素氧化过度(过老)或水稀释过度; (6)漂洗溶液的污染; (7)切片过薄; (8)乙醇的去除或者染色前水的漂洗不充分。 染色过度是由于: (1)组织切片干燥; (2)苏木素浓度过高; (3)染色时间过长; (4)载玻片粘合剂过多; (5)脱色:过弱或时间不足; (6)切片过厚; (7)热暴露的时间过长。 5、水洗:苏木素染色后,用水洗组织是非常重要的。这一步以及随后的水洗,可将多余的染料,媒染剂等去除。适当的漂洗可以去除表面金属光泽,金属光泽可阻止苏木素的染色。 注意:跳过此步,将产生不好的结果,例如沉淀的形成,染液的稀释,表面金属光泽的存在。 6、酸酒精:酸酒精分色剂3~5sec。在苏木素染色方法中,组织切片有意过度染色,酸酒精将去除多余的染料以及玻片上的背景染色。 注意:如果没有此步骤,组织切片将变为暗紫色。嗜酸结构,例如,胶原,将不会呈现明亮 的粉红色。组织结构之间将很难区分。很难对切片做出正确的判断。分色过度可能是由于: (1)酸浓度过高; (2)脱色时间过长等。 分色不足是由于: (1)酸浓度过低; (2)脱色时间不足; (3)在切片上有多余的蛋白或者明胶等。 7、水洗:水洗30sec,终止酸酒精反应,进一步阻止酸酒精从组织切片上将大量苏木素去除。 注意:如果切片没有经过漂洗,酸酒精可以过度脱色。如果不去除脱色剂,酸酒精将持续从组织切片上去除苏木素。 8、自来水冲洗或用蓝化液蓝化:自来水冲洗3~5min,可起到发蓝处理,将紫红色的苏木素转变为蓝紫色。通常,发蓝试剂是pH依赖性的,由碱性溶液构成。因此,如果自来水作为发蓝试剂,pH值的每天监控是非常重要的,因为自来水的pH值可能每天都会波动。 或用蓝化液蓝化,30sec~1min;流动的自来水冲洗5min; 注意:跳过发蓝试剂步骤,将会导致苏木素染液的颜色发生微妙的变化,难以区分。代替深蓝色,细胞核将呈现紫色,有时甚至是红色。细胞核不可过度蓝染。如果组织染色过蓝,一般是在组织切片上苏木素过多所致。 9、水洗:为伊红复染做准备,通过水洗30sec,将多余的发蓝试剂去除。因为在碱性环境下,伊红无法染色,水洗去除发蓝试剂将允许伊红保持其酸性pH值,使伊红得以均匀复染。 注意:发蓝试剂之后,如果没有水洗,组织切片无法正确使用伊红染色。因此,酸性结构将被染为苍白色并且不均匀,进而导致错误的判断。 10、伊红:为了正确区分胞内结构,伊红是出色的苏木素复染剂。伊红复染30~60sec,可根据染色结果和要求调整染色时间。伊红是酸性染料,可染细胞质,尤其是线粒体、分泌颗粒和胶原。它可以区分细胞内不同的细胞器以及不同的结缔组织。 注意:使用伊红复染组织切片的失败,将导致组织切片的低分化。 染色较弱是由于: (1)组织切片过薄; (2)染色时间不足; (3)随后95%酒精分化过度。 染色过度是由于: (1)染液浓度较高(可能是由于过度蒸发); (2)组织切片过厚; (3)染色时间过长; (4)随后95%酒精分化不足。 伊红染色未分化(一种颜色)是由于: (1)固定不彻底; (2)过度染色(染色时间过长;染液浓度过高) 11、95%乙醇:95%乙醇处理2 s~1 min,根据染色结果和要求调整;伊红分化将产生不同的粉色。 注意:如果95%乙醇被稀释(例如,从前一步染色中携带了伊红),分化的效果较差。 12、100%乙醇:通过100%乙醇使组织切片脱色。100%乙醇处理1 min;再用新的100%乙醇处理1 min。 注意:这一步很难引起注意,若无95%乙醇,难以区分酸性结构,组织切片成为粉色。若无100%乙醇脱水,组织切片不能完全脱水,导致在盖片下形成水珠。这些水珠可与下一步的二甲苯结合而形成白色混浊物,这将影响组织切片的质量。 13、二甲苯:二甲苯处理5min。在充分脱水后,二甲苯可将组织切片上的酒精去除。去除酒精后,在载玻片上加盖玻片时,二甲苯也可作为包埋剂确保可溶解。由于有潜在的毒性,二甲苯替代品,例如柠檬烯、环烷烃也可使用。替代品可提供相同的组织染色质量,并且他们使用更安全,操作更简单。 注意:当跳过此步骤时,不使用二甲苯透明,酒精将会保存于组织切片上,导致伊红从切片上流出。 14、封片:中性树胶封片,自然风干或烤干,显微镜观察。 染色结果: 细胞核染为蓝色;细胞质染为红色。 |
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