WB实验小技巧

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WB实验小技巧

2024-06-15 00:36| 来源: 网络整理| 查看: 265

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实验员小哈的个人空间_哔哩哔哩_Bilibili

正常情况下,六孔板的每个孔长满约有100万个细胞,加入40μL蛋白裂解液,测得的蛋白浓度约为3-5μg/μL,也就是说总蛋白150-200μg。

点样的时候,每个泳道点30μg蛋白,这对于一般的WB检测已经足够了。

通常我们跑WB,最多需要配4块胶,每块胶检测3-4种不同分子量的蛋白。(最多需检测16种蛋白,你见过更多的吗)

一次性跑3-4块胶,看似麻烦,其实是在省时间。

因为我想收一次蛋白样品就用完扔掉,检测出所有想检测的蛋白,而不是只跑两块胶,再去用stripping buffer,多花费了一天时间。

不少试剂公司都有卖stripping buffer,按照产品说明书正确使用,剥离一抗的效果确实不错。

如果经费不足,可以按照abcam提供的stripping buffer 配方来配。

下载:https://docs.abcam.com/pdf/protocols/western-blot-membrane-stripping-for-restaining-protocol.pdf

stripping 配方

选择合适的蛋白Marker也很重要,marker条带多,意味着可以在一张膜上多剪一条带,多孵育一种蛋白。

你会选择左边还是右边的蛋白marker ?

事实上,WB最重要的步骤之一是测定蛋白浓度:浓度测得不准,最终得到的结果就很难看。

把标准蛋白样品(5mg/mL)用蛋白裂解液稀释成1.25,2.5mg/mL,每次测浓度时都拟合出一条标准曲线,这样得到的浓度更准确,有利于后续结果分析。



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