1.本发明是关于一种益生菌贴剂及其制备方法与应用，具体而言，是关于副干酪乳杆菌et-22在制备用于防治口腔溃疡的药物中的应用、一种包含副干酪乳杆菌et-22的益生菌组合物、由所述组合物制成的益生菌贴剂、其制备方法及其应用。

背景技术：

2.口腔溃疡俗称“口疮”，是一种常见的发生于口腔黏膜的溃疡性损伤症状。口腔溃疡的发生是多种因素综合作用的结果，包括局部创伤、精神紧张、食物、药物、营养不良、激素水平改变及维生素或微量元素缺乏等。3.现有技术已知多种益生菌有助于治疗口腔溃疡。cn109985179a公开了一种治疗口腔溃疡的组合物，该组合物包括以下重量份的原料：新鲜芦笋1000-15000份、唾液乳杆菌0.1-10份、乳双歧杆菌0.1-20份、副干酪乳杆菌0.1-20份、青黛0.1-50份、淀粉10-1000份；该组合物可补充人体所需微量元素，对口腔溃疡患者有内在免疫调节与口腔环境改善的作用，增强机体免疫力，对促进疮疡愈合，具体应用时是做成丸剂、散剂、胶囊剂、片剂或冲剂等口服药物。cn113425831a公开了一种治疗口腔溃疡的益生菌组合物及其制备方法和应用，所述益生菌组合物包括如下重量份原料：宝乐果粉40～60份、木姜叶柯30～60份、益生菌10～20份、柳叶蜡梅1～5份、低聚甘露糖1～5份、乌药叶1～5份、初乳碱性蛋白1～5份；该组合物采用具有抗氧化作用的宝乐果粉和木姜叶柯，达到治疗口腔溃疡的作用，可以减少益生菌的用量，低聚甘露糖还能够促进益生菌的生长，使各益生菌之间发挥协调作用，同时通过含有的柳叶蜡梅、米糠脂肪烷醇、乌药叶和初乳碱性蛋白均具有治疗口腔溃疡的作用，进而预防和改善口腔溃疡，具体应用时是做成喷雾剂。4.上述现有技术的治疗口腔溃疡的含有益生菌的药物中，益生菌本身对于治疗口腔溃疡的贡献并不突出，并且，口服药物存在作用部位广、需药量大、药物利用率低等缺点，喷雾剂在喷涂后需要在一定时间内禁止饮水、进食，使用时存在诸多不便。

技术实现要素：

5.本发明的一个目的在于提供一种防治口腔溃疡的益生菌。6.本发明的另一目的在于提供副干酪乳杆菌et-22在制备用于防治口腔溃疡的药物中的应用。7.本发明的另一目的在于提供一种包含副干酪乳杆菌et-22的益生菌组合物。8.本发明的另一目的在于提供一种由所述组合物制成的益生菌贴剂。9.本发明的另一目的在于提供一种益生菌贴剂的制备方法。10.本发明的另一目的在于提供益生菌组合物或贴剂的应用。11.本案发明人在研究中发现，副干酪乳杆菌(lactobacillus paracasei)et-22是一种能够防治口腔溃疡的益生菌，其菌体和/或其胞外代谢物能够显著防治口腔溃疡。进一步，将副干酪乳杆菌et-22和/或其胞外代谢物制备成益生菌贴剂，能够有效对口腔溃疡部位杀菌，可有效防止伤口的二次感染。12.本发明中，所述防治包括预防和/或治疗。13.从而，一方面，本发明提供了副干酪乳杆菌在制备用于治疗口腔溃疡的药物中的应用，其中，所述副干酪乳杆菌包括副干酪乳杆菌et-22菌体和/或其胞外代谢物，所述副干酪乳杆菌et-22为保藏编号cgmcc no.15077的菌株。14.保藏编号cgmcc no.15077的副干酪乳杆菌(lactobacillus paracasei)et-22菌株是已在cn110964653a中公布的生物材料，是公众可以得到的。15.根据本发明的具体实施方案，本发明中，所述副干酪乳杆菌et-22菌体为活菌体和/或灭活的菌体。16.根据本发明的具体实施方案，本发明中，所述副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物是按照以下方法制备得到的：17.从副干酪乳杆菌et-22的孵育液中去除菌体，得到副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物；优选地，所述孵育液为副干酪乳杆菌et-22在水中孵育获得。18.优选地，将副干酪乳杆菌et-22菌体以1～5×109cfu/ml的浓度溶解至水中，37℃、200～500转/分钟的条件下搅拌孵育2～4小时，孵育结束后离心去除菌体，得到副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物。19.根据本发明的具体实施方案，本发明中，所述口腔溃疡包括由于病原菌引起的口腔溃疡、由于氧化损伤引起的口腔溃疡或免疫低下引起的口腔溃疡。20.另一方面，本发明还提供了一种益生菌组合物，其包括：副干酪乳杆菌et-22菌体和/或其胞外代谢物；所述副干酪乳杆菌et-22为保藏编号cgmcc no.15077的菌株。21.根据本发明的具体实施方案，本发明中，所述益生菌组合物还包括：羧甲基纤维素钠、蜂胶、冰片、润滑剂、甘油和吐温-20；优选地，各组分的重量份为：[0022][0023]根据本发明的具体实施方案，本发明的益生菌组合物中，所述各组分的重量份为：[0024][0025]根据本发明的具体实施方案，本发明的益生菌组合物中，所述副干酪乳杆菌et-22菌体为活菌体和/或灭活的菌体。[0026]根据本发明的具体实施方案，本发明的益生菌组合物中，所述副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物是按照以下方法制备得到的：[0027]将副干酪乳杆菌et-22菌体以1～5×109cfu/ml的浓度溶解至水中，37℃、200～500转/分钟的条件下搅拌孵育2～4小时，孵育结束后离心去除菌体，得到副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物。[0028]根据本发明的具体实施方案，本发明的益生菌组合物中，所述润滑剂可为液体石蜡或口腔贴剂常用的其他润滑剂。[0029]另一方面，本发明还提供了所述的益生菌组合物在制备用于防治口腔溃疡的组合物中的应用。[0030]根据本发明的具体实施方案，所述口腔溃疡包括由于病原菌引起的口腔溃疡、由于氧化损伤引起的口腔溃疡或免疫低下引起的口腔溃疡。在本发明的一些具体实施方案中，副干酪乳杆菌et-22活菌能够显著预防、治疗由于病原菌或氧化损伤引起的口腔溃疡。在本发明的一些具体实施方案中，副干酪乳杆菌et-22灭活菌的涂抹可以显著预防、治疗免疫低下引起的口腔溃疡。在本发明的一些具体实施方案中，副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物对于防治口腔溃疡具有显著的效果。[0031]根据本发明的一些具体实施方案，本发明的用于防治口腔溃疡的组合物为药物组合物。优选地，所述药物组合物为贴剂。[0032]根据本发明的一些具体实施方案，本发明的用于防治口腔溃疡的组合物可以为一般化妆品。[0033]另一方面，本发明还提供了一种益生菌贴剂的制备方法，该方法包括：[0034](1)将副干酪乳杆菌et-22菌体和/或其胞外代谢物、蜂胶、羧甲基纤维素钠和润滑剂混合均匀，得到混合体系a的步骤；[0035](2)将冰片、甘油和吐温-20隔水加热混匀，得到混合体系b的步骤；[0036](3)将混合体系a和混合体系b混合均匀的步骤；[0037](4)干燥处理步骤。[0038]需要说明的是，本发明的制备方法的各步骤，(1)、(2)的标号并不表示这两个步骤必须按照所描述的先后顺序进行，实际操作中，也可以先进行步骤(2)、再进行步骤(1)，或是两个步骤同时进行。[0039]另一方面，本发明还提供了一种益生菌贴剂，其是以本发明所述的组合物制备得到的，或经上述益生菌贴剂的制备方法制备得到。[0040]综上所述，本发明提供了副干酪乳杆菌et-22和/或其胞外代谢物在防治口腔溃疡方面的用途，并提供了所制备得到的益生菌贴剂。本发明通过动物模型证明，副干酪乳杆菌et-22活菌能够显著预防、治疗由于病原菌或氧化损伤引起的口腔溃疡；副干酪乳杆菌et-22灭活菌的涂抹可以显著预防、治疗免疫低下引起的口腔溃疡；副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物用于预防和/或治疗口腔疾病时有良好的效果。本发明所述的益生菌贴剂，与口腔黏膜的粘附性好；添加冰片还具有清热解毒、消肿止痛的作用；能够有效对口腔溃疡部位杀菌，可有效防止伤口的二次感染。附图说明[0041]图1为实施例2预防组造模48h后icr小鼠舌头损伤评分值结果图。[0042]图2为实施例2治疗组造模72h后icr小鼠舌头损伤评分值结果图。[0043]图3为实施例2预防组造模48h后空白组、模型组和益生菌组小鼠舌背病变切片he染色结果图；图中，a为舌组织上皮细胞乳头状突起，b为组织增生。[0044]图4为实施例2预防组造模48h后典型的地鼠口腔粘膜组织切片的he染色照片；图中，白色箭头指向炎性细胞浸润，黑色箭头指向粘膜上皮破损、脱落，灰色箭头指向毛细血管充盈扩张、腺体增生(标尺：200μm)。[0045]图5为实施例2预防组造模48h后典型的地鼠口腔溃疡粘膜组织免疫组化照片(标尺：100μm)。[0046]图6为实施例2地鼠口腔溃疡粘膜组织中的lxa4和pge2水平及血清中促炎细胞因子il-6和il-1β水平结果图。[0047]图7为实施例2地鼠血清中的sod活性、gsh和mda水平结果图。[0048]图8为实施例2地鼠口腔细菌在门水平上的组成。[0049]图9为实施例2地鼠口腔中具有显著差异的菌属。[0050]图10为实施例3不同益生菌处干预下模拟牙齿表面生物膜生物量的变化结果图；[0051]图11为实施例3不同益生菌处干预下模拟牙齿表面生物膜生物量结构的变化的扫描电镜结果图。[0052]图12为实施例3不同益生菌处干预下模拟牙齿表面生物膜生物量结构的变化的激光共聚焦显微镜结果图。[0053]图13为实施例3不同益生菌处干预下模拟牙齿表面生物膜厚度变化结果图。具体实施方式[0054]为了对本发明的技术特征、目的和有益效果有更加清楚的理解，现结合具体实施例及对本发明的技术方案进行以下详细说明，应理解这些实例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。实施例中，各原始试剂材料均可商购获得，未注明具体条件的实验方法为所属领域熟知的常规方法和常规条件，或按照仪器制造商所建议的条件。[0055]除非另外专门定义，本文使用的所有技术和科学术语都与相关领域普通技术人员的通常理解具有相同的含义。[0056]本发明的各实施例中，所述副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物是按照以下方法制备得到的：将副干酪乳杆菌et-22接种至培养基中，培养后得到菌液，将et-22菌液离心，从而获得副干酪乳杆菌et-22菌体(菌泥)；[0057]将所获得的副干酪乳杆菌et-22菌体以1～5×109cfu/ml的浓度溶解至水中，37℃、200～500转/分钟的条件下搅拌孵育3小时，孵育结束后离心去除菌体，从而得到副干酪乳杆菌et-22胞外代谢物。[0058]实施例1[0059]本实施例提供了一种治疗口腔溃疡的益生菌贴剂，制备所述益生菌贴剂的原料包括副干酪乳杆菌et-22菌体和/或其胞外代谢物、羧甲基纤维素钠、蜂胶、冰片、润滑剂、甘油和吐温-20，各原料的重量份为：[0060][0061]制备益生菌贴剂的方法包括以下步骤：[0062](1)按上述的重量份数比，将副干酪乳杆菌et-22菌体和/或胞外代谢物、蜂胶、羧甲基纤维素钠和润滑剂，得到混合体系a；[0063](2)按上述的重量份数比，将冰片、甘油和吐温-20置于容器中隔水加热，搅拌混合均匀，得到混合体系b；[0064](3)将混合体系a和混合体系b混合均匀后，经干燥处理，制得所述治疗口腔溃疡的益生菌贴剂。[0065]实施例2、副干酪乳杆菌et-22防治口腔溃疡作用[0066]1.实验动物模型[0067]1.1免疫低下造成的口腔溃疡模型[0068]预防组动物模型：为了在小鼠中诱发口腔念珠菌病，本发明使用了先前描述的方案，并做了一些小的修改。小鼠适应期结束后，实验组进行为期18天的益生菌干预(饮水中添加益生菌109cfu/ml)，空白组和模型组正常饮水。第15天通过饮用水给小鼠服用15mg/ml四环素盐酸盐，并同时进行诱导免疫抑制状态，泼尼松龙(100mg/kg)皮下注射。第16天对模型组和实验组进行白色念珠菌cgmcc 2.4122感染，感染时使用4％的三氯乙醛水合物(10ml/kg)进行麻醉)；然后在口腔的各个部位感染了1.0×109cfu/ml白色念珠菌，将白色念珠菌浸渍的棉签放置在舌背上15分钟。小鼠于术后48小时安乐死。[0069]治疗组动物模型：为了在小鼠中诱发口腔念珠菌病，本发明使用了先前描述的方案，并做了一些小的修改。小鼠适应期结束后，通过饮用水给小鼠服用15mg/ml四环素盐酸盐，并同时进行诱导免疫抑制状态，泼尼松龙(100mg/kg)皮下注射。第2天对模型组和实验组进行白色念珠菌cgmcc 2.4122感染，感染时使用4％的三氯乙醛水合物(10ml/kg)进行麻醉)；然后在口腔的各个部位感染了1.0×109cfu/ml白色念珠菌，将白色念珠菌浸渍的棉签放置在舌背上15分钟。感染24小时后(第三天)益生菌干预组每12小时进行一次益生菌涂抹干预，攻击涂抹4次，涂抹方法同感染涂抹方法，小鼠于术后72小时(第5天)安乐死。[0070]1.2氧化损伤口腔溃疡金黄地鼠模型[0071]六周龄的雄性lvg叙利亚金黄地鼠(lvg golden syrian hamster)，体重(110±20)g/只，购自北京维通利华实验动物技术有限公司，饲养条件为12h光照交替，温度保持在20±2℃，湿度维持在45％-50％。地鼠在饲养室驯化一周后，随机分成10组，分别为正常对照组、模型组、et-22活菌组、et-22灭活菌组、et-22胞外代谢物组以及k12、hn019、dsm17938、ap32的活菌组和维生素c阳性对照组(vc组)，正常对照组有7只，其余组别各10只。正常对照组和模型组地鼠每天灌胃1ml生理盐水，et-22活菌组每天灌胃1ml浓度为109cfu/ml的et-22活菌溶液，et-22灭活菌组和et-22胞外代谢物组分别灌胃1ml相应浓度的et-22灭活菌和菌胞外代谢物，vc组每天灌胃1ml浓度为20mg/ml的维生素c溶液。灌胃15天后进行口腔溃疡造模，先腹腔注射10％水合氯醛(注射量为0.3-0.5％体重)麻醉地鼠，在正常对照组地鼠颊囊内注射0.25ml pbs缓冲液(ph＝7.4)，其余5组地鼠均颊囊注射0.25ml甲基紫精(10mmol/l，溶于pbs)；注射当天直至地鼠被处死，各组仍保持每天灌胃干预。于造模后第4天将地鼠麻醉、取血，随后用口腔拭子刮拭地鼠口腔内部(除溃疡部位)，剪取拭子头放入装有核酸保护液的离心管；剪取口腔溃疡病灶组织或正常粘膜，分为两份，一份固定于4％多聚甲醛中，另一份液氮冻存。将全血分离出血清后，分装冻存于-80℃。[0072]2.实验动物分组[0073]预防组将其分为以下10组：[0074][0075]治疗组将其分为以下7组：[0076][0077]口腔病症感染严重程度评分-小鼠[0078]各组小鼠于术后48(预防组)/72(治疗组)小时小鼠被安乐处死后，进行舌病变严重程度的评估观察。根据舌面白色凝乳样斑块的范围和严重程度，通过0到4的病变评分表达感染的宏观评估，如下所示：0分，正常；1分，白色斑块在20％以下；2分，白色斑块在90％以下但在21％以上；3分，白色斑块在91％以上；厚白色斑块状假膜占91％以上。[0079]取小鼠全舌于舌尖中间纵切一分为二，取其中一份于常温固定在4％多聚甲醛中性缓冲液中，然后用石蜡包埋。将样品沿舌尖切割成5μm厚的连续纵截面，然后使用苏木精法进行染色。参考文献使用徕卡荧光显微镜显微镜进行观察染色。[0080]口腔病症感染严重程度评分-金黄地鼠[0081]将石蜡切片依次脱蜡和梯度脱水后，采用柠檬酸抗原修复缓冲液(ph＝6.0)进行抗原修复，随后将切片放入3％双氧水溶液中避光孵育25min以阻断内源性过氧化物酶，再经过封闭、一抗孵育、二抗孵育等操作步骤，最后进行dab显色和细胞核复染，脱水封片，于显微镜下观察和拍照。免疫组化评分采用irs(immunoreactive score)评分法，对其染色程度(0-3分)和阳性率(0-4分)分别进行评分后，相乘得到综合评分(0-12分)；评分标准如下，染色程度以目的蛋白所呈现出的染色特性计分：无着色为0分，淡黄色为1分，棕黄色为2分，棕褐色为3分；阳性率按照切片中细胞阳性比率进行计分：0-5％为0分，6％-25％为1分，26％-50％为2分，51％-75％为3分，》75％为4分。综合评分0分为阴性(-)；1-3分为弱阳性(+)；4-5分为阳性(++)；6-7分为强阳性(+++)。[0082]组织病变观察结果：[0083]图1为实施例2预防组造模48h后icr小鼠舌头损伤评分值结果图，由图1可知，预防组在手术48小时后，与模型组小鼠舌头损伤评分相比只有et-22活菌组出现了显著差异(p《0.05)，且平均评分降低了46.23％；dsm 17938活菌组与模型组的平均评分一致；其余实验组损伤评分虽然没有出现显著差异但也多有不同程度的降低。et-22分泌物组(胞外代谢物组)、k12活菌组、hn019活菌组、ap32活菌组分别降低了31.9％、32.26％、35.48％以及41.94％；et-22灭活菌组和l9活菌组分别降低了16.13％和16.13％。[0084]图2为实施例2治疗组造模72h后icr小鼠舌头损伤评分值结果图，由图2可知，治疗组中，与模型组小鼠舌头损伤评分相比只有et-22灭活菌组出现了显著差异(p《0.05)，但益生菌组均出现了一定治愈率，副干酪乳杆菌et-22的代谢物的治愈率最低11％，损伤评分降幅最少23％，其余各种治愈率在30％-40％，损伤评分降幅在50％-60％。[0085]预防组损伤评分分析：[0086]sanae.a.ishijima等人探究唾液链球菌k12在小鼠模型中模型组的舌头平均损伤评分为3.4，经1.5×109cfu/ml唾液链球菌k12治疗后平均损伤评分为2.0。[0087]本发明此次预防实验经1.0×109cfu/ml唾液链球菌k12治疗后平均损伤评分为2.1，1.0×109cfu/ml副干酪乳杆菌et-22活菌、灭活菌和胞外代谢物组的平均损伤评分分别为1.7、2.6和2.1。副干酪乳杆菌et-22活菌在预防白色念株菌病方面优于唾液链球菌k12活菌，副干酪乳杆菌胞外代谢物组与唾液链球菌k12活菌在预防白色念珠病具有相同的疗效。胞外代谢物组与活菌相比其保存方法更加简单，应用场景更加广泛。[0088]舌背病变切片观察：[0089]预防组造模48h后，空白组、模型组和益生菌组小鼠舌背病变切片he染色结果如图3所示；图中，a为舌组织上皮细胞乳头状突起，b为组织增生。由图3可知，与空白组相对比，模型组出现了严重的炎症浸润，et-22活菌组、et-22分泌物组(胞外代谢物组组)、k12活菌组、hn019活菌组、ap32活菌组炎症浸润有明显的改善，et-22灭活菌组和l9活菌组炎症浸润也较为严重，dsm 17938活菌组的炎症浸润严重于模型组。[0090]由图3可知，与空白组相对比，模型组舌组织上皮细胞乳头状突起严重损失，脱皮和组织增生明显。et-22活菌组、et-22分泌物组和ap32活菌组舌组织上皮细胞乳头状突起保存完好，无脱皮，但与空白组相比有轻微的组织增生。et-22灭活菌组舌组织上皮细胞乳头状突起有较为明显的损失，无脱皮，出现较为明显的组织增生。l9活菌组舌组织上皮细胞乳头状突起有一定的损失，轻微脱皮，组织增生与模型组类似。k12活菌组舌组织上皮细胞乳头状突起损失明显，无脱皮，有一定的组织增生。dsm 17938活菌组舌组织上皮细胞乳头状突起损失明显，有轻微脱皮，组织增生严重。[0091]以上可以看出，et-22活菌组、et-22胞外代谢物组、ap32活菌组、k12活菌组对口腔念珠病预防有一定的疗效，减轻了炎症和舌组织病变情况。et-22活菌组的疗效效果最优。[0092]粘膜组织切片及he染色：[0093]实施例2预防组造模48h后，典型的地鼠口腔粘膜组织切片的he染色照片如图4所示；图中，白色箭头指向炎性细胞浸润，黑色箭头指向粘膜上皮破损、脱落，灰色箭头指向毛细血管充盈扩张、腺体增生(标尺：200μm)。如图4所示，正常对照组地鼠口腔粘膜上皮连续性完好，细胞和腺体形态正常，无明显炎性细胞浸润。与正常对照组相比，模型组地鼠口腔粘膜上皮破损、脱落，连续性不完整，毛细血管充盈扩张，出现大量炎性细胞浸润，表明口腔溃疡模型造模成功。与模型组相比，et-22活菌组的干预效果最好，该组地鼠的口腔粘膜上皮连续性相对完整，炎性细胞浸润明显减少；而et-22灭活菌组、et-22胞外代谢物组的地鼠口腔粘膜上皮仍有部分破损，并且存在部分炎性细胞浸润。k12活菌和hn019活菌组的地鼠口腔粘膜上皮完整程度较高，但还存在少量炎性细胞浸润；dsm17938活菌和ap32活菌组的地鼠口腔粘膜上皮连续性不完整，有明显的炎性细胞浸润现象。维生素c常被认为有助于防治口腔溃疡，从图中可看出，虽然vc组的地鼠口腔粘膜上皮缺失相较模型组有所改善，但破损仍相对严重，并且有较多炎性细胞浸润。这些结果说明食用et-22，尤其是et-22活菌，可降低口腔溃疡的发病风险、减轻溃疡症状，并且比预先补充vc具有更好的效果。[0094]粘膜组织免疫组化结果：[0095]nf-κb是一种重要的转录因子，其信号通路的激活可启动炎症反应；此外，nf-κb信号通路的激活可促进mmp-9表达上调，mmp-9可降解层黏连蛋白和iv型胶原，加速炎性细胞的浸润与转移。caspase 3的高表达可能促使细胞凋亡上调，还能水解parp，导致parp无法正常参与dna的损伤修复，从而加重细胞凋亡。[0096]预防组造模48h后典型的地鼠口腔溃疡粘膜组织免疫组化照片(标尺：100μm)如图5所示。如图5和表1所示，正常对照组地鼠口腔粘膜组织的nf-κb、mmp-9、caspase 3、parp均呈阴性表达，而在模型组中上述4种蛋白的表达均显著升高(p＜0.05)。模型组的nf-κb和mmp-9表达显著升高，提示口腔粘膜发生炎症反应，且基膜和细胞之间的连接受到破坏。模型组的caspase 3和parp表达显著升高，提示粘膜细胞凋亡上调，引发溃疡粘膜的上皮损伤、脱落。这些蛋白在模型组的阳性表达与he染色反映的结果相一致。[0097]与模型组相比，et-22活菌、et-22灭活菌、et-22胞外代谢物和k12活菌组中这4种蛋白的表达均显著下降(p＜0.05)；hn019活菌组中除了nf-κb之外，其余表达均显著下降；dsm17938活菌组中只有caspase 3和parp表达显著下降，nf-κb和mmp-9表达与模型组无显著性差异；ap32活菌组中nf-κb、caspase 3、parp表达有显著下降，mmp-9表达与模型组无显著性差异；vc组中只有nf-κb和caspase 3的表达显著下降，mmp-9和parp的表达下调但与模型组无显著性差异(表1)。该结果表明，et-22对口腔溃疡的预防具有积极作用。[0098]表1口腔粘膜组织免疫组化平均评分[0099][0100]口腔溃疡粘膜组织的脂氧素a4(lxa4)和前列腺素e2(pge2)水平：[0101]lxa4是一种具有抗炎作用的内源性脂质，可抑制il-6等促炎细胞因子的分泌。[0102]地鼠口腔溃疡粘膜组织中的lxa4和pge2水平结果如图6所示。图6显示，与正常对照组相比，模型组的lxa4含量无显著变化，推测由于模型组没有进行干预，其lxa4激活程度较低，炎症消退缓慢，因此也导致溃疡较严重和持久。与模型组相比，et-22活菌组、et-22胞外代谢物组和k12活菌组的lxa4含量显著提高(p＜0.05)，表明通过它们可能通过提高lxa4水平发挥抗炎作用，进而减轻口腔溃疡症状；et-22灭活菌、hn019活菌、dsm17938活菌、ap32活菌和vc组则与模型组无显著性差异。[0103]pge2可以加剧炎症反应，促进局部血管扩张、毛细血管通透性增加。与正常对照组相比，模型组的pge2含量显著升高，表明模型组口腔粘膜出现剧烈的炎症，与其严重的溃疡表型一致。与模型组相比，et-22活菌、et-22灭活菌、et-22胞外代谢物、k12活菌和vc组的pge2均显著降低(p＜0.05)，其水平介于模型组和对照组之间；而hn019活菌、dsm17938活菌和ap32活菌组则与模型组无显著性差异。[0104]血清的促炎细胞因子水平：[0105]地鼠血清中促炎细胞因子il-6和il-1β水平如图6所示。与正常对照组相比，模型组地鼠血清中促炎细胞因子il-6和il-1β水平显著升高(p＜0.05，图6)，提示口腔溃疡造模成功。et-22活菌、et-22灭活菌、et-22胞外代谢物组和k12活菌组地鼠血清中的il-6浓度均比模型组显著下降(p＜0.05)，表明et-22与k12可以降低炎症反应，进而起到减缓口腔溃疡的作用；此外，所有干预组地鼠血清中il-1β的浓度均比模型组显著下降(p＜0.05)。该结果提示et-22和k12比其他组具有更好的免疫调节作用，可通过调节机体免疫抵御口腔溃疡的形成或恶化。[0106]血清的sod活性、mda和gsh浓度[0107]sod和gsh是重要的抗氧化酶和抗氧化剂，它们的升高提示机体因产生氧化应激而刺激了抗氧化物质的升高；mda是脂质过氧化产物，反映了氧化应激的损伤程度。[0108]预防组造模48h后，地鼠血清中的sod活性、gsh和mda水平如图7所示。与正常对照组相比，模型组地鼠血清中gsh和mda水平显著升高(p＜0.05)，sod活性也有升高但不显著。与模型组相比，et-22活菌、et-22灭活菌和vc组的sod活性、gsh和mda水平均显著降低(p＜0.05)，et-22胞外代谢物组仅有mda水平出现显著下降。在其余各对照菌株组中，mda水平均显著降低，但在sod活性和gsh水平上并没有都出现明显的调节效果。vc组的结果在意料之中，与vc的抗氧化特性相吻合，et-22活菌和et-22灭活菌组的结果则表明都它们与vc效果类似，能一定程度地降低氧化应激损伤，具有良好抗氧化潜质。[0109]口腔菌群的多样性和组成[0110]预防组造模48h后，地鼠口腔细菌在门水平上的组成如图8所示。从门水平的组成分析可见(图8)，地鼠口腔核心菌群有厚壁菌门(firmicutes)、拟杆菌门(bacteroidota)、变形菌门(proteobacteria)、梭杆菌门(fusobacteriota)等，与前人的报道一致。[0111]预防组造模48h后，地鼠口腔中具有显著差异的菌属如图9所示。从属水平分析发现(图9)，模型组地鼠口腔的伯格菌属(bergeyella)和芬戈尔德菌属(finegoldia)的相对丰度显著高于正常对照组(p＜0.05)。伯格菌属被发现与牙周病等口腔疾病密切相关；芬戈尔德菌属可以通过激活中性粒细胞诱发炎症。与模型组比较，et-22活菌显著下调伯格菌属和芬戈尔德菌属的占比，et-22胞外代谢物可以显著下调伯格菌属比例(p＜0.05)，et-22灭活菌组则未出现显著改变。因此，et-22活菌可能通过抑制口腔有害菌降低口腔溃疡的发病风险。[0112]实施例3[0113]本实施例对比了副干酪乳杆菌et-22、et-22胞外代谢物、唾液链球菌k12对变异链球菌生物膜生成量、生物膜结构的影响。[0114]构建唾液包被羟磷灰石模型：配置染液与菌液的混合液备用，菌液选用副干酪乳杆菌et-22活菌溶液、et-22胞外代谢物溶液、唾液链球菌k12溶液，菌液浓度为109cfu/ml，胞外代谢物溶液浓度为等量菌浓度。准确取用羟基磷灰石(ha)珠子将其高压灭菌后，置于24孔培养板中，每孔加入1.5ml含有0.2％蔗糖的人造唾液中浸泡37℃包衣培养，之后用1.5ml无菌pbs洗涤两次并吸干缓冲液，加入细菌悬浮液各750ml，37℃培养2h(期间选取不同时间段进行测量，每次测量前用1.5ml无菌pbs漂洗，每次漂洗10s，冲洗三次)，即制成唾液包被的羟磷灰石模型，模拟牙齿表面的唾液获得性膜结构。利用结晶紫染色法，用酶标仪在595纳米处测量结果表征生物膜的生成量。使用荧光生物成像系统进行检测，为了量化ha模型上细菌生物膜的染色情况以及细菌的定植情况，手动设置每种荧光颜色的荧光强度阈值，使用spectral instruments imaging软件程序进行荧光成像的荧光强度分析。[0115]图10表示在模拟唾液环境中，各益生菌组干预下，模拟牙齿表面生物膜生物量的变化。由图10可知，et-22灭活菌体和胞外代谢物组生物膜生成量显著降低，且差异极显著(p《0.00001)，相比而言，et-22胞外代谢物组生物膜生成量最低；k12活菌组生物膜生成量均高于对照组。[0116]本实施例利用sem分析了在模拟唾液环境中，各益生菌组干预下模拟牙齿表面生物膜生物量结构的变化。图11为实施例3不同益生菌处干预下模拟牙齿表面生物膜生物量结构的变化的扫描电镜结果图，如图11所示，在人工唾液培养体系对照组形成的是菜花状的多层堆积状生物膜立体结构，et-22灭活菌组、胞外代谢物组均显著抑制了生物膜的含量，并破坏了菜花状的生物膜结构，k12活菌组呈现单层堆积的生物膜状态，抑制效果不明显。其中，et-22胞外代谢物组的抑制作用效果最为明显，生物膜呈现单层、零散分布的状态，明显优于其他各处理组。[0117]本实施例利用激光共聚焦显微镜分析了在模拟唾液环境中，各益生菌组干预下模拟牙齿表面生物膜生物量结构与厚度的变化。结构变化如图12所示，对照组的生物膜中菌含量以活菌(绿色)为主。et-22灭活菌组生物膜中死菌(红色)含量显著升高。et-22胞外代谢物非常显著的降低了生物膜中的活菌的数量，同时降低了生物膜的分布面积。生物膜厚度变化如图13所示，对照组生物膜厚度高达120μm，et-22灭活菌组、胞外代谢物组均显著抑制了生物膜的厚度，其et-22胞外代谢物处理下，生物膜的平均厚度仅为62μm，与对照组相比，下降48％。[0118]最后应说明的是，以上仅用以说明本发明的技术方案而非限制，尽管参照较佳布置方案对本发明进行了详细说明，本领域的普通技术人员应当理解，可以对本发明的技术方案进行修改或者等同替换，而不脱离本发明技术方案的精神和范围。