原标题：动物实验的基本手术操作——万融实验

1.备皮方法　动物的被毛常能影响实验操作和结果的观察，因此实验中常要去除或剪短动物的被毛。除毛的方法有剪毛、拔毛和脱毛三种。

（1）剪毛：固定动物后，用粗剪刀剪去所需部位的被毛。剪毛时应注意以下几点：①把剪刀贴紧皮肤剪，不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。②依次剪毛，不要乱剪。③剪下的毛集中放在一个容器内，勿遗留在手术野和兔台周围，以保证手术野的清洁和防止注射器等夹毛。

（2）拔毛：兔耳缘静脉注射或取血时，以及给大、小白鼠行尾静脉注射时，要用拇指、食指将局部被毛拔去，以利操作。

（3）脱毛：指用化学药品脱去动物的被毛，适用于无菌手术的准备以及观察动物局部皮肤血液循环和病理变化。

常用脱毛剂的配方：

硫化钠3g、肥皂粉1g、淀粉7g，加水适量调成糊状。硫化钠8g，溶于100mL水中。以上脱毛剂配方适用于家兔、大鼠、小鼠等小动物的脱毛。使用脱毛剂应事先剪短被毛，以节省脱毛剂，并减少对皮肤的刺激反应，应用时用棉球蘸脱毛剂，在所需局部涂一薄层，2～3分钟后，用温水洗去脱落的被毛，以纱布擦干局部，涂一层油脂即可。2.皮肤切开和止血（1）切开皮肤：先用左手拇指和食指绷紧皮肤，右手持手术刀切开皮肤，切口大小量度以便于手术操作为宜，但也不可过大。（2）止血：手术过程中要注意随时止血，以免造成手术视野模糊，难以分辨血管和神经，延误手术时间。止血方法视出血情况而定，若为小血管出血，可用温热生理盐水纱布按压止血；较大血管出血，须先找到出血点，用止血钳夹住，然后用线结扎；若为大血管破损，应准确迅速止血，否则失血过多，影响实验，甚至造成实验动物的死亡。实验期间，应将创口暂时闭合，或用温热的生理盐水纱布盖好，以免组织干燥。3.神经、血管分离技术　组织分离有钝性和锐性两种。钝性分离不易损伤神经和血管，常用于分离肌肉包膜、脏器和深筋膜等；锐性分离要求准确、范围小，避开神经、血管或其他脏器。（1）颈动脉分离术：暴露气管，分别在颈部左右侧用止血钳分离开肌肉，在胸头肌与胸舌骨肌之间，可看到与气管平行的颈总动脉，它与迷走神经、交感神经、减压神经伴行于颈动脉鞘内（注意颈动脉有甲状腺动脉分支）。用玻璃分针小心分离颈动脉鞘，并分离出颈总动脉3cm左右，在其下面穿两条线，一线在近心端动脉干上打一虚结，供固定动脉套管用，另一线准备在头端结扎颈总动脉。（2）迷走神经、交感神经、减压神经分离术：按上法找到颈动脉鞘，先看清3条神经走行后，用玻璃分针小心分开颈动脉鞘。迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细，且常与交感神经紧贴在一起（一般先分离减压神经，图3-41）。每条神经分离出2～3cm，并各穿一条不同颜色的、生理盐水润湿的丝线以便区分。（3）颈外静脉分离术：颈部去毛，从颈部甲状软骨以下沿正中线做4～5cm皮肤切口，夹起一侧切口皮肤，右手指从颈后将皮肤向切口顶起，在胸锁乳突肌外缘，即可见到颈外静脉。用玻璃分针分离出2～3cm，下穿双线备用。（4）内脏大神经分离术：兔麻醉固定，沿腹部正中线做6～10cm切口，并逐层切开腹壁肌肉和腹膜。用温热的生理盐水纱布推腹腔脏器于一侧，暴露肾上腺，细心分离肾上腺周围脂肪组织。沿肾上腺斜外上方向，即可见一根乳白色神经（图3-42）即内脏大神经。分离清楚后，在神经下引线备用。4.插管技术（1）气管插管术：①仰位固定动物，颈前区备皮，从甲状软骨下沿正中切开并逐层分离，暴露气管。②分离并游离气管。在气管下方（食管上方）穿粗线备用。③甲状软骨下0.5cm处横向切开气管前壁，再向头端作纵向切口，使切口呈“⊥”形。④一手提线，另一手插气管套管，结扎固定（图3-43）。（2）颈总动脉插管术：①用注射器向管道系统注满肝素生理盐水，排尽气泡，检查管道系统有无破裂，动脉套管尖端是否光滑（不可太尖），口径是否合适。②尽可能靠头侧结扎颈总动脉。用动脉夹尽量靠近心脏侧夹闭颈总动脉。两者之间相距2～3cm，以备插管。③用小拇指撑起颈总动脉，用锐利的眼科剪，靠结扎处朝心脏方向剪一“V”形切口，注意勿剪断颈总动脉。④生理盐水润湿的动脉插管，从切口向心脏方向插入颈总动脉，保证套管与动脉平行，以防刺破动脉壁。插入1～0.5cm，用线将套管与颈总动脉一起扎紧，以防脱落。（3）静脉插管术：在已分离好的家兔颈静脉上，用线结扎远心端，在结扎处近心侧的静脉上朝心脏方向剪一“V”形切口，将静脉套管（带芯）向心性插入静脉，结扎固定即可。（4）膀胱插管法：自耻骨联合上缘沿正中线向上做一长约5cm的皮肤切口，再沿腹白线剪开腹壁和腹膜（勿损伤腹腔脏器），切开腹壁，将膀胱轻移至腹壁上。先用棉线结扎膀胱颈部，以阻断它与尿道的通路，然后在膀胱顶部选择血管较少处剪一纵行小切口，插入膀胱插管（或漏斗），用线结扎、固定。膀胱插管口最好正对着输尿管在膀胱的入口处，但不要紧贴膀胱后壁而堵塞输尿管口。膀胱插管的另一端用导管连接至记滴器。

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