免疫印迹(Western Blot)的基本原理、实验步骤

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免疫印迹(Western Blot)的基本原理、实验步骤

2023-03-26 12:26| 来源: 网络整理| 查看: 265

原理

Western Blot采用的是聚丙烯酰胺凝胶电泳,被检测物是蛋白质,“探针”是抗体,“显色”用标记的二抗。SDS-PAGE可对蛋白质样品进行分离,转移到固相载体——例如硝酸纤维素薄膜(NC)上。固相载体可以吸附蛋白质,并保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。转移后的NC膜就称为一个印迹(blot),用蛋白溶液(如5%BSA或脱脂奶粉溶液)处理,封闭NC膜上的疏水结合位点。用目标蛋白的抗体(一抗)处理NC膜——只有待研究的蛋白质才能与一抗特异结合形成抗原抗体复合物,这样清洗除去未结合的一抗后,只有在目标蛋白的位置上结合着一抗。用一抗处理过的NC膜再用标记的二抗处理,二抗是指一抗的抗体,如一抗是从鼠中获得的,则二抗就是抗鼠IgG的抗体。处理后,带有标记的二抗与一抗结合形成抗体复合物可以指示一抗的位置,即是待研究的蛋白质的位置。

PVDF膜Western Blot实验试剂及仪器

1.试剂准备(1)甲醇(2)转移缓冲液(Tris5.8g 甘氨酸2.9g SDS 0.37g 甲醇200ml V=1L)(3)一抗,二抗(4)PBST,PBS,Tween-20(5)显影液(5X):自来水(加热至 50℃) 375ml (以下药品加到温水中)米吐尔 1.55g, 亚硫酸钠(无水) 22.5g, 碳酸钠(无水) 33.75g, 溴化钾 20.95g,补水至 500ml(6)定影液:自来水(50~60℃) 700ml (以下药品按顺序加入前者溶解后再加后者)硫代硫酸钠 240g, 亚硫酸钠(无水) 15g, 冰乙酸 12.6ml,硼酸 7.5g,钾明矾 15g(水温冷至 30℃以下时再加入),加水定容至 1000ml,室温保存2. 材料准备转膜用的夹子,两块海绵垫,一支滴管,两张滤纸,一张PVDF膜,转膜槽,转移电泳仪,摇床,计时器,磁力搅拌器,转子,Western blot 盒,一块SDS-PAGE胶,脱脂奶粉

A:电泳分离蛋白质,由裂解细胞或组织制备目的蛋白质样品,经SDS-PAGE电泳处理后,不同分子质量大小的蛋白质得到分离。

B:转膜,将电泳分离的条带从凝胶转移至NC/PVDF膜上。常用的方法是电洗脱或电泳转移,形成“负极-海绵-三层滤纸-胶-膜-三层滤纸-海绵-正极”转膜结构,在施加电场后蛋白质从聚丙烯酰胺凝胶中移出并吸附在膜表面。

C:抗体孵育,用目标蛋白的抗体(一抗)处理膜,漂洗除去未结合的抗体,膜上仅含有目标蛋白结合的一抗。再用标记的二抗进行酶免疫定位。

D:显影分析,用x-ray底片曝光,根据信号的强弱调整曝光时间或不同时间多次压片以达到最佳效果。曝光完成后取出x-光片迅速浸入显影液中显影,待条带明显后停止显影,分析结果。

实验注意事项转膜:转膜时滤纸与胶、胶与膜、膜与滤纸之间不能有气泡,否则会影响转膜的效果。膜封闭:转好的膜用TBST润洗两次, 再用5%脱脂奶粉溶液(TBST配制)常温封闭一至两小时,抑制抗体非特异性吸附膜上未反应的位点。抗体的选择:免疫实验中标记的二抗是检测靶抗原的最终手段。如果一抗是未修饰的小鼠单克隆抗体,二抗必须是从非小鼠宿主获得的抗小鼠IgG第二抗体。洗涤缓冲液:实验中通过洗涤去除未结合的试剂并降低背景,增加信噪比。洗涤不充分会导致高背景;洗涤过度会使抗原/抗体从印迹中洗脱导致敏感性降低。显影和定影:移动时尽量手拿胶片一角避免划伤影响结果。

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5、各种环肽:酰胺键环肽、二硫键环肽、脲基环肽、酯键环肽、单硫键环肽等

6、蛋白交联:KLH,BSA,OVA

7、含特殊氨基酸肽:含有D型氨基酸及其他氨基酸衍生物

8、不同纯度范围:粗肽、脱盐、>70%、>80%、>90%、>95%、>98%、>99%。

9、不同盐体系范围:常规三氟乙酸盐(TFA salt)、醋酸体系、盐酸体系、磷酸体系。

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