对于16S接头涉及还有更多国外经典图示文章。如一步法扩增来构建文库，两步法扩增来构建文库。

下面为来源一个博客的文章。

Illumina测序平台无疑是市场上众多二代测序平台中的翘楚，高通量、高质量、低成本，操作简便，重现性好，各种好处使他的成绩在同班众兄弟中遥遥领先，公认为学霸。要想把Illumina平台用到极致，则样本的碱基平衡度是七寸和肯綮，不得不加以关注。只要把握好这一点，二代测序就能成功一大半。在影响和改善样本碱基平衡度的各种因素和途径中，barcode是重要的一环。

Barcode放在什么地方好呢？

Illumina把barcode放在下游接头(adaptor)的中间。其文库结构简式如下：

或者：

当然也可以如下设计：

为了省钱，很多人决定自己动手来设计、合成接头。还是为了省钱，自己设计的接头不得不与Illumina试剂兼容。受这样的限制，大部分barcode的位置就被设计成了这样：

或者： [式5] 5’-上游接头-样本插入片段-barcode-下游接头-3’

或者：

这种设计问题严重。缺点也有两个：第一，缩短了有效读长，第二，降低了样本的碱基平衡度。

以式4为例，由于Illumina测序引物的杂交位点位于上游接头的3’端，read 1的测序读长就被barcode占用了一部分，有效读长变短了。Read 2的有效读长不变。假设barcode长7个碱基，read 1测序101个碱基，则有效读长就只有101-7=94个碱基。

还是由于Illumina测序引物的杂交位点位于上游接头的3’端，read 1测序一上来测的就是barcode序列。如果barcode组合的碱基组成不平衡的话，全部测序数据都将受到拖累，质量降低。因为Illumina软件需要使用前4个碱基的统计数据来定位cluster，使用前25个碱基的数据来计算PF。假设barcode长7个碱基，且碱基组成不平衡，则read 1测序的cluster定位和PF计算都将受到严重影响。Barcode的碱基组成肯定要比未知样本的低。

优点有没有呢？好像没有。

## 三、自定义设计的改进

自己设计barcode、自己合成接头，怎样才能避免上述弊端呢？不妨考虑以下改进措施：

其中SPACER是一系列长短不等的短片段，要求做到两点：第一，长度有变化；第二，碱基有变化。比如说像下面这样的一套：

不同的barcode配合不同长度和不同碱基组成的spacer使用，可以形成barcode被错开的效果，自然而然地增加了barcode的碱基平衡度。虽然有效读长更短了，但是后果更严重的碱基平衡度问题被解决了。考虑到Illumina软件使用前4个碱基的数据来定位cluster，spacer的最大长度为4个碱基比较好。

Spacer也能用于改进PCR产物测序。

PCR扩增产物（amplicon）的两端都是引物序列，如果PCR只使用一对引物，各自有大约20个碱基（PCR引物的长度）的范围内，碱基组成是极度不平衡的。由于每个位置都只有1种碱基，测序数据的质量和产量都将受到严重影响。

只要在PCR引物的外侧（5’端）加上不同长度的spacer，就可以到达平衡碱基的效果，无论引物(primer)还是扩增区域（target）都被错开，即使是高度重复序列区域（比如说16S rDNA）的PCR扩增物，也能提高碱基复杂度，达到平衡，巧妙地解决了令人头疼的amplicon-seq难题。

参考来源：http://garification.lofter.com/post/1cc7c557_5f66ab2